DYCP-31BN型琼脂糖水平电泳仪操作全攻略：从菜鸟到熟练工的必经之路

作者：六一生物发布时间：2025-11-19 09:08:25 点击：

刚接触DYCP-31BN这款电泳仪？别被一堆零件吓到。本文以一名实验猿新手的视角，手把手带你完成第一次完美跑胶，并分享那些我踩过的坑，让你快速上手，告别条带模糊、跑歪的尴尬。

还记得我第一次面对DYCP-31BN这台仪器时，看着电泳槽、梳子、托盘一堆东西，心里直发怵。看说明书太枯燥，问师兄师姐又怕被嫌弃……经过大半年的“摸爬滚打”，我终于把它摸透了。今天，我就把我的“血泪史”整理成这份最贴地的全攻略，带你轻松通关。

第一部分：开箱与“第一印象”

DYCP-31BN是实验室的经典款，设计很朴实。拿到手，我们先清点“家当”：

主体电泳槽（带电极）。
凝胶托盘（制胶的平台）。
样品梳（形成上样孔的模具）。
两端挡板（封边用的）。

我的第一个思考：这东西干不干净？所以第一步永远是清洗！用去离子水轻轻冲洗各部分，尤其是凝胶托盘和梳子，然后用纸巾擦干。任何残留都可能影响后续制胶和电泳效果。

第二部分：手把手制胶（最关键的步骤！）

案例实操：今天我需要分离一段1000bp左右的DNA片段。

1. 配琼脂糖溶液：我称量了0.3g琼脂糖粉末，倒入锥形瓶，再加入30ml的1x TAE电泳缓冲液（最终浓度1%）。这里有个坑：液体不要超过锥形瓶的一半，否则微波加热时容易暴沸喷出，非常危险！
2. 加热溶解：放入微波炉，中高火加热1分钟，取出小心晃荡（烫！），再加热30秒，直至溶液完全清澈透明，没有颗粒。
3. 冷却：这是新手极易忽略的一步！刚取出的胶液温度很高，直接倒入托盘会使托盘变形，甚至烫坏。我通常放在室温下冷却到手背感觉温热（大概60℃），时间紧迫时，可以用自来水冲洗瓶壁外部加速冷却。
4. 倒胶：在托盘两端卡好挡板，插入合适的梳子（我一般用8孔或10孔的）。将冷却好的胶液缓缓倒入托盘，确保没有气泡。如果真有气泡，可以用枪头把它戳破。
5. 凝固：室温静置20-30分钟。如何判断胶凝好了？我看两个地方：一是胶体变得半透明不流动，二是梳子齿周围会有一圈明显的折射光晕。切忌心急，没凝好的胶一拔梳子就全毁了。

第三部分：上样与电泳

1. 搭建电泳系统：胶凝好后，轻轻拔出梳子，动作要垂直向上，温柔点。取下两端挡板，将整个托盘放入电泳槽。槽内加入足量的1x TAE缓冲液，液面以刚没过胶面1-2mm为宜。太浅会导致导电不均，太深会使样品扩散。
2. 点样：这是我的“高光时刻”。取5μL DNA样品，与1μL 6x Loading Buffer混匀。用微量移液器吸取混合液，Tip头尖端小心伸入加样孔内，缓慢地将样品推出。关键技巧：左手可以轻轻扶着右手的移液器，防止抖动；样品会因比重大自然沉入孔底。千万注意别戳破孔壁，否则样品会漏，条带就难看了。
3. 盖盖通电：盖上电泳槽盖子，确认电极（红对红，黑对黑）连接正确。设置电泳参数：我通常用120V恒压，跑20-30分钟。看到 Loading Buffer里的溴酚蓝条带跑过胶的2/3时，就可以停止了。

第四部分：结果观察与“翻车”现场复盘

跑完胶，在凝胶成像仪下观察。一条条清晰的DNA条带，就是对我们最好的奖励。

但我翻过车：

案例1：条带模糊、拖尾。原因：琼脂糖浓度不对或DNA降解了。后来我学会了根据DNA片段大小选择合适的胶浓度（0.8%-2%）。
案例2：条带跑歪了。原因：缓冲液加的太多，或者配错了缓冲液浓度（误用了50x的母液），导致电场不均匀。
案例3：什么都没看到。原因：电极插反了！DNA全跑进缓冲液里了。所以一定要记住 “黑对黑，DNA向红跑” （负极到正极）。

结语：

DYCP-31BN就像一位可靠的老伙计，操作简单，皮实耐用。只要你掌握了以上步骤，避开了我提到的那些“坑”，你就能轻松驾驭它，为你的分子实验打下坚实的基础。祝你每次跑胶都条带清晰！

本文由北京六一生物编辑整理。

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