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电泳技术全攻略:从原理到实战的详细指南

作者:六一生物 发布时间:2025-06-19 09:38:14 点击:
    小伙伴们,在实验室的众多技术里,电泳技术就像一把“神奇的梳子”,能把乱糟糟混在一起的带电粒子,按照它们各自的“体型”“长相”和“电量”梳理得明明白白。它到底是怎么做到的?又能在哪些地方大显身手?今天就带大家一探究竟!

一、电泳技术的核心原理:带电粒子的“速度竞赛”

简单来说,电泳就是给带电粒子们办了一场“速度竞赛”。不同的带电粒子,因为分子大小、形状以及所带电荷不一样,在电场这个“跑道”上,受到的“推力”(电场力)和“阻力”不同,跑起来的速度也就有快有慢。就好比在跑步比赛里,大人小孩、胖瘦不同的选手,跑起来速度肯定不一样,咱们就是利用这个差异,实现对它们的分离、鉴定和纯化。

以核酸和蛋白质为例,核酸分子在特定条件下会带上负电荷,蛋白质则根据所处溶液的pH值,或带正电、或带负电、或呈电中性。一旦把它们放进电场,这些带电粒子就像被无形的手推着,朝着电极方向移动。小个头、带电量大的粒子,在电场里移动得快;大个头、带电量小的,自然就跑得慢,这样一来,原本混在一起的它们,就慢慢分开了。

二、电泳技术的广泛应用:实验室里的“多面手”

电泳技术在科研和实际应用中,那可是个“全能选手”,尤其在核酸和蛋白质研究领域,发挥着不可替代的作用。

- 核酸研究:PCR产物鉴定是它的“拿手好戏”。做PCR实验后,我们得到的产物里可能有各种长度的DNA片段,就像一堆长短不一的绳子混在一起。通过电泳,不同长度的DNA片段在琼脂糖凝胶这个“赛道”上,按照长度差异分开,我们在凝胶上就能清晰地看到一条条不同位置的条带,就像给DNA片段拍了张“证件照”,一眼就能判断PCR产物的情况,是不是扩增出了目标片段、片段长度对不对,全都一目了然。除了PCR产物鉴定,DNA测序、基因分型等实验,也都离不开电泳技术的帮忙。

- 蛋白质研究:在蛋白质分离、鉴定和纯度分析上,电泳技术同样表现出色。比如蛋白质的SDS - PAGE电泳,能把不同分子量的蛋白质分离开,帮助我们了解样品里蛋白质的组成;免疫印迹(Western Blot)实验,更是借助电泳先分离蛋白质,再通过抗体特异性结合,精准检测特定蛋白质是否存在以及表达量高低。在生物制药领域,电泳技术还用于检测药物中蛋白质的纯度和质量,确保药品安全有效。

- 其他领域:在临床诊断中,电泳技术可以分析血清蛋白,帮助医生诊断疾病;在法医鉴定里,它能通过分析DNA片段,进行个体识别;在食品检测方面,也能用来检测食品中的蛋白质、核酸等成分,保障食品安全。

三、琼脂糖凝胶电泳详细步骤:手把手教你操作

以琼脂糖凝胶电泳鉴定PCR产物为例,具体操作步骤如下:

1. 溶化:给琼脂糖“洗热水澡”

称取25g琼脂糖,倒进盛有25ml电泳缓冲液的三角瓶里,就像把“面条”放进“汤碗”。用封口膜把瓶口封严实,再拿橡皮筋绑紧,防止加热时液体溅出来。然后把三角瓶放进微波炉或者沸水浴里加热,这一步就像给琼脂糖“洗热水澡”,直到琼脂糖完全溶化,溶液变得像清水一样透明。加热过程中,最好每隔一会儿拿出来晃一晃,让琼脂糖充分溶解,避免底部烧焦。

2. 倒模:制作“分子跑道”

把完全溶化的琼脂糖溶液小心地倒进胶盒里,倒的时候动作要轻,别让溶液里产生气泡,不然会影响后续电泳效果。气泡就像跑道上的“绊脚石”,会干扰分子的正常迁移。倒完后,轻轻把梳子插进溶液,等它慢慢凝固,梳子的位置就会形成一排加样孔,这就是我们一会儿要放样品的地方,相当于给分子们准备了“起跑线”。

3. 凝固:耐心等待“跑道成型”

这个过程需要一点耐心,就像等果冻凝固一样。等凝胶完全凝结,轻轻拔出梳子,注意别把加样孔弄破了。这时候,一个专属于核酸分子的“跑道”就做好啦!

4. 加液:给“跑道”注水

把装有凝胶的胶托从胶盒里取出来,放进电泳槽内,记住要让加样孔一端朝向负极,这一步可不能搞错,不然核酸分子就会“跑反方向”。然后往电泳槽里加入电泳缓冲液,让液面没过凝胶,就像给跑道注满水,这样核酸分子才能在“水上”顺利迁移。

5. 加样:让样品“就位”

用微量移液器往50μL的PCR产物中加入10μL的6×上样缓冲液,然后轻轻混合均匀。上样缓冲液就像给样品加了“导航”,能让我们在电泳过程中看到样品的迁移情况。接着,把20μL的样品混合液缓慢加入到加样孔内,除了第一个加样孔外,其余加样孔都加入DNA Marker与上样缓冲液的混合液。DNA Marker就像“标尺”,能帮助我们判断样品DNA片段的长度。每次加样后,一定要记得更换枪头,防止样品之间交叉污染,就像吃饭不能共用同一双筷子一样。

6. 电泳:开始“分子赛跑”

盖上电泳槽盖,把电极插头连接好,接通电源,将电压设置为80V,分子们的“赛跑”就正式开始啦!跑25分钟左右,关闭电源停止电泳。这个过程中,要注意观察溴酚蓝的颜色,它就像“领跑员”,要是它快跑出凝胶了,就得赶紧停止电泳,不然样品就会跑出凝胶,咱们就看不到结果了。

7. 染色:让条带“现身”

- 方案一:把凝胶小心放进培养皿,倒入1%的亚甲基蓝溶液,让液面超过凝胶5mm左右,就像给凝胶“泡个染色澡”,染8分钟。期间轻轻晃动培养皿,让染液充分接触凝胶,同时注意排除气泡。染液用完后可以回收,下次还能接着用,既环保又省钱。染完后,倒掉染液,倒入75%的酒精,重复晃动操作,最后加入冷的蒸馏水进行脱色,一直到出现清晰的蓝色区带。这个过程中,如果蒸馏水被染蓝了,可以随时更换,直到背景变干净,条带清晰可见。不过要注意,染色时间不能太长,不然颜色会变淡甚至消失。

- 方案二:把凝胶放在培养皿里,倒入0.02%的亚甲基蓝溶液,没过凝胶5mm,轻轻晃动培养皿后盖上盖子,放进4℃冰箱冷藏过夜。第二天,当看到清晰的蓝色条带时,倒掉染液,染色就完成了。同样,染液可以回收利用。

8. 观察步骤:解读“分子密码”

在桌面上铺一张白纸,把盛有凝胶的培养皿放在白纸上方,距离保持在5cm以上,这样更容易看清条带。蓝色条带就是DNA的“藏身之处”,仔细观察并记录条带的数量和位置。然后把凝胶放在平的透明玻璃板上,借助三脚架固定好,拍照留存,方便后续分析。用直尺紧贴凝胶表面,测量每个DNA条带中央到加样孔的距离,记录在表格里,再对照已知的Marker条带位置和对应的DNA片段长度,就能推测出PCR产物的长度,就像用尺子量出绳子的长度一样。

四、常见问题原因分析与应对策略:实验“排雷”指南

在电泳实验中,难免会遇到各种“小麻烦”,下面就给大家总结一些常见问题的原因和解决办法:

1. 条带异常

- 条带模糊:看起来糊糊的,就像没对焦的照片。这可能是因为蛋白质降解或变性,比如样品处理时温度太高、时间太长;也可能是凝胶浓度没选对,或者电泳过程中电压不稳定。解决办法就是处理样品时尽量在温和条件下操作,别让蛋白质“受伤”;根据蛋白质大小调整凝胶浓度;电泳时保持电压稳定,避免因过热出现“幽灵”条带。

- 条带断裂:原本连续的条带出现裂痕,就像绳子断成了几截。这多半是凝胶质量不好,或者电泳条件没控制好。下次实验记得选高质量的凝胶材料,优化电泳温度和电压,给分子们打造一个“平坦”的跑道。

- 背景噪音高:杂乱的背景色把条带都快遮住了,就像照片背景太乱看不清主体。可能是染料浓度太高,或者固定、脱色步骤没做好。把染料浓度调低,确保固定和脱色步骤彻底,就能让条带“脱颖而出”。

- “微笑”形带:条带两端上翘,中间下凹,像个微笑的表情。这通常是电泳时温度波动,或者电场分布不均匀导致的。在电泳过程中保持温度稳定,检查电极设置,让电场分布均匀,就能让条带“变直”。

- “皱眉”形带:条带两端下凹,中间凸起,像皱着眉头。常见原因是凝胶中间凝固不均匀,特别是较厚的凝胶更容易出现这种情况。下次等凝胶完全充分凝固后再进行后续操作;如果是蛋白质垂直电泳出现这个问题,可能是两板间底部有气泡,加点缓冲液把气泡排掉就行。

- 带拖尾:条带后面拖着长长的“尾巴”,这是因为样品溶解不好,或者分离胶浓度太高。加样前先离心,去掉不溶物;加点样品促溶剂帮助溶解;要是电泳缓冲液用太久了,就重新配制;适当降低凝胶浓度,让分子们能“顺畅奔跑”。

2. PCR后电泳多条带

PCR实验后电泳出现多条条带,就像一团乱麻。可能是引物设计得不合理,和模板结合不专一;退火温度太低,引物和模板错配;DNA聚合酶质量差,扩增出了非特异性产物;或者模板被污染了。解决办法就是重新设计引物,调整退火温度,换质量好的DNA聚合酶,操作时注意防止模板污染,比如实验前清洁工作台、戴手套等。

五、结语:掌握电泳技术,开启科研新征程

电泳技术虽然看起来复杂,但只要我们搞懂原理,记住操作步骤,遇到问题能“对症下药”,就能在实验中得心应手。每一次电泳实验,都是一次和微观世界的对话,精准的操作、细致的观察,是解开分子密码的关键。希望大家通过不断实践,都能成为电泳领域的“高手”,在科研道路上收获更多精彩的成果!以后实验中遇到其他问题,也欢迎随时交流,咱们一起攻克难关! 

以上内容通过更丰富的细节和实例,让电泳技术相关知识更易理解。若你觉得某些部分需要再调整,比如增减案例、修改表述,随时和我说。

 
本文由北京六一生物编辑整理。

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